动物医学毕业论文犬细小病毒病诊治及病理变化.doc

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1、目录摘 要II关键词IIAbstractIIIKey wordIII1.前 言12.材料与方法32.1实验材料32.1.1实验动物32.1.2实验仪器32.1.3 药品试剂32.2 实验方法32.2.1诊断方法32.2.3 临床治疗42.2.4 典型病例剖检42.2.5 病理切片的制作与观察43.实验结果63.1 临床诊断结果63.1.1发病年龄分布情况63.1.2 发病季节分布情况63.2 临床治疗结果73.3 大体剖检结果73.4 病理切片镜检结果84.讨论124.1 流行特点124.2 发病病因与发病机理124.3诊断与鉴别诊断124.3.1犬瘟热与犬细小病毒病的鉴别诊断134.3.2犬

2、细小病毒病与其他相似病的鉴别诊断134.4 综合治疗措施144.4.1肠炎型犬细小病毒病的综合治疗144.4.2心肌炎型犬细小病毒病的综合治疗144.5 病理变化与诊治之间的联系144.6 预防方法及常见免疫失败原因155.结论176.参考文献18致谢19犬细小病毒病诊治及病理变化摘 要采用不同方法治疗临床确诊的103例犬细小病毒病病犬,观察临床疗效;对病死犬剖检,心、肝、肺、脾、肾、胃、小肠切片、HE染色观察病理变化。结果:单独采用对症治疗的36例患犬,治愈率为8.3%;单独采用对因治疗的10例患犬,治愈率为50%;采用综合治疗的57患犬,治愈率为87.7%。表明综合治疗方法较单一方法效果更

3、好。病死犬剖检见腹腔内有血性腹水,肝脏肿大,偶见破裂,胃黏膜表面有大量出血斑和溃疡灶,十二指肠有不同程度的充血、坏死,胆囊充盈。HE染色可见消化道出血、坏死,肺有充血出血及气肿,肝淤血、变性,肾出血、透明变性。关键词:细小病毒;综合治疗;石蜡切片;HE染色;病理变化;犬Treatment and pathological changes of canine parvovirus diseaseAbstract Clinical therapeutic effect treating by different methods was compared in 103 cases of canine

4、 parvovirus (CPV) disease diagnosed with CPV kits. Postmortem of dead dogs was conducted. Heart, liver, kidneys, lungs, spleen, stomach and intestine were sectioned to observe histological changes by paraffin section and HE staining. The results showed that cure rate was 8.3% in 36 cases treated wit

5、h symptomatic treatment, 50% in 10 cases treated with etiological treatment, 87.7% in 57 cases treated with the multimodality therapy, which showed that multimodality therapy is better than that of single method. Hemorrhagic ascites in abdomen cavity, hepatomegaly and rupture, a large number of blee

6、ding spots and necrosis in gastric mucosa, different levels of congestion and necrosis in duodenum and gall bladder filling were observed in autopsy. HE staining showed gastrointestinal bleeding and necrosis, pulmonary congestion and emphysema, hepatic congestion and degeneration and renal hemorrhag

7、e and hyalinization.Key word: Parvovirus; Multimodality therapy; Paraffin section; HE staining; Pathological changes; Canine1.前 言犬细小病毒病是由犬细小病毒引起的一种急性传染病。临床上以出血性腹泻、剧烈呕吐及高度沉郁或非化脓性心肌炎为主要特征。该病可感染各年龄阶段犬,尤其幼犬发病率和死亡率很高1。本病于1978年同时在澳大利亚和加拿大证实以来,已在世界很多地区相继发现。我国于1982年证实此病之后,在东北、华东和西南等地区的警犬和良种犬中陆续发生和蔓延。随着宠物行业的

8、发展,伴侣动物数量的增加,以及动物的活动范围不断扩大,相互交叉日益频繁,该病的防治工作越来越受到业内外人士的重视。该病的病原细小病毒(parvovirus)属于细小病毒科,细小病毒属。病毒粒子呈圆形,直径2040nm,二十面体对称,无囊膜,由32个壳粒组成其DNA约占整个病毒粒子重量的2534,分子量为1.41061.7106u(原子质量单位),沉淀系数为2327s。该病毒独特的结构与其化学组成,使其对外界的理化因素抵抗力很强。粪便中的病毒可存活数月至数年,410可存活半年以上。病毒对乙醚、氯仿、醇类和去氧胆酸盐有抵抗力,但对紫外线、福尔马林、次氯酸钠、氨水和氧化剂等消毒剂敏感。细小病毒几乎都

9、有凝集红细胞的特性,血凝和血凝抑制试验是鉴定本病毒和诊断本病的方法。犬细小病毒病主要感染犬,偶尔也可感染貂、狐、狼等其他犬科和鼬科动物,犬不分品种、年龄、性别均可感染 ,但以幼犬的发病率和病死率高。有时感染率可达100 %,致死率为10 %60 %,一年四季均可发病,以冬,春多发。饲养管理条件骤变,长途运输,寒冷,拥挤均可促使本病发生。病犬是主要传染源,呕吐物,唾液,粪便中均有大量病毒。康复犬仍可长期通过粪便向外排毒。有证据表明人,虱,苍蝇和蟑螂可成为CPV的机械携带者。健康犬与病犬或带毒犬直接接触,或经污染的饲料和饮水通过消化道感染。 该病潜伏期为714d。多数呈现肠炎综合征,少数呈现心肌炎

10、综合征。肠炎病犬表现为经12d的厌食、软便,间或体温升高之后,迅速发展成为频繁呕吐和剧烈腹泻,呕吐物有时呈咖啡色,带有泡沫,排出恶臭的酱油样或番茄汁样血便,并迅速出现眼球下陷、皮肤失去弹性等脱水症状,很快呈现耳鼻发凉、末梢循环障碍、精神高度沉郁等休克状态。心肌炎型病犬无明显临床症状,有的突然呼吸困难,心力衰竭,短时间内死亡;有的病犬轻度腹泻后死亡。刚出生的幼犬感染细小病毒后出现心脏病变,它能迅速破坏幼犬心肌细胞。继而患犬出现气喘、口腔粘膜和皮肤发绀,有时突然衰竭死亡是幼犬患本病的唯一体症。耐受过的幼犬由于存在永久性心肌损伤,在感染后数周以至数月仍可死于本病。 对病犬污染的饲具、用具、运输工具和

11、饲养人员等进行严格的消毒和做好健康犬的预防接种是防止本病发生的主要措施。CPV的病程短急、恶化迅速,心肌炎型常来不急治疗即死亡;肠炎型及时合理治疗,治愈希望较大。该病的实验室诊断方法有病毒分离(vi)、电镜(EM)观察、血凝/血凝抑制试验(HAHI)、 乳胶凝集试验(LAT)、酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫层析试验(ICA)、聚合酶链式反应(PCR)以及在PCR基础之上的实时荧光定量PCR(realtime PCR)等。常用治疗方法是在早期大量注射单克隆抗体和高免血清的同时,进行强心、补液、抗菌、消炎、抗休克等对症治疗,同时注意保暖、禁食等护理,可以很大程度的提高治愈率。本文笔者采用不同

12、方法治疗临床确诊的103例犬细小病毒病病犬,观察临床疗效,分析合理治疗方案;对病死犬剖检,采取心、肝、肺、脾、肾、胃、小肠等器官的典型病变进行石蜡切片、HE染色观察病理变化,为该病的治疗和研究提供借鉴。2.材料与方法2.1实验材料2.1.1 实验动物 作者2009年7月至2010年1月与贵州大学贝斯特动物医院所见临床123例疑似犬细小病毒病病例,包括俩例典型死亡病例。2.1.2实验仪器常规外科手术器械(上海医疗器械有限公司手术器械厂),橡胶手套,光学显微镜,显微成像系统,组织切片机(JP-40型),恒温水浴锅,酒精灯,载玻片,盖玻片,恒温箱等。2.1.3 药品试剂1. 犬细小病毒诊断试剂盒(韩

13、国Anigen公司生产的CPV诊断试剂盒)2. 治疗药品:5%的葡萄糖生理盐水、碳酸氢钠、洛美沙星、利巴韦林、山莨胆碱,止血敏、西米替丁、爱茂尔、三磷酸腺苷、辅酶A、维生素B、维生素K3、氨苄西林、青霉素、头孢曲松钠、犬细小病毒单克隆抗体(北京京霸生物技术开发研究公司)、犬五联血清(中国人民解放军军事医学科学院军事兽医研究所)等。3. 病理切片试剂:石蜡,80乙醇,95%乙醇、100%乙醇、二甲苯、苏木素和伊红等。2.2 实验方法2.2.1诊断方法根据临床症状及一般检查作出初诊,疑为细小病毒感染的用试纸做进一步诊断。用棉签取病犬的粪便及其肛门周围分泌物少许,插入装有反应稀释液的样品管中,搅拌混

14、匀,用吸管吸取少量的样品稀释液,向试纸样品孔中滴入几滴,10-20分钟后若测试线和对照线均成红色即为阳性,可确诊为该病。无T线出现时可判为阴性。若无C线出现则表示对照不成立,结果无效,可能使用方法不当或试纸已变质,应查明原因,重新测试。在诊断过程中对阳性犬的年龄和发病季节作统计学分析,用作流行情况调查。2.2.3 临床治疗对症治疗:以调节水、电平衡紊乱和酸碱平衡紊乱,控制继发感染为主,合理运用止血药和止吐药。对因治疗:用犬细小病毒单克隆抗体按1mL/kg体重和犬五联高免血清1mL/kg体重肌肉注射,每天一次,连用3-5天。 综合治疗:对症治疗和对因治疗同时进行。2.2.4 典型病例剖检 两例细

15、小病死亡毒犬,经主人同意,按以下顺序作进一步剖检。剖检顺序:新鲜尸体外表检查剥皮和皮下检查剖开腹腔下做一般检查剖开胸腔做一般检查摘出腹腔脏器摘出胸腔脏器摘出口腔和颈部器官颈部、胸部和腹腔脏器检查骨盆腔脏器摘出和检查剖开颅腔,摘出大脑检查剖开鼻腔检查剖开脊椎管,摘出脊髓检查肌肉、关节和淋巴结的检查骨和骨髓的检查。2.2.5 病理切片的制作与观察1.病料的采集与固定采取心、肝、脾、肺、肾、胃、肠等组织样品。分别用100mL/L中性福尔马林溶液固定。2.病理切片的制作(1)脱水、透明分别取各组织病变部位一小块,流水冲洗5-6h之后进行梯度乙醇脱水(80乙醇2h95%乙醇1h100%乙醇2h)、二甲苯

16、透明2次(2)浸蜡将组织置入熔化的60左右的石蜡中浸透,直至其硬度与石蜡的硬度相似,大约用时2h。(3)包埋用与最后一次浸蜡的石蜡熔点相一致的石蜡把组织制成石蜡块。(4)切片和贴片修整蜡块:可视其组织的大小,在组织边缘约0.10.2cm处,切去余蜡部分,否则易造成组织皱缩不平。安装蜡块:将修好的蜡块安装在金属或木制持蜡器上。安装切片刀:将切片刀安装在切片机的刀台上,把刀台上的紧固螺丝旋紧,使切片时不产生振动,能保持一定的切片厚度。切片:用组织切片机将包埋的蜡块切成约5m厚的切片。铺片:用眼科镊子镊起蜡带轻轻平铺在4045的水面上,借水的张力和水的温度,将略皱的蜡带自然展平。贴片、烘片:待切片在

17、恒温水面上充分展平后,将蜡片捞到载玻片的中段处倾去载玻片上的余水,置入6065恒温箱内或切片漂烘温控仪的烘箱内烤片1530分钟,脱去溶化组织间隙的石蜡。(5)H.E染色和封片及镜检HE染色的染色剂的制备:苏木素染液配方(1000mL):苏木素2.5g,无水酒精25mL,硫酸铝钾(钾明矾)50g,或硫酸铝(铵明矾),蒸馏水500mL,黄色氧化汞1.25g,冰醋酸20mL 配制方法: 配制时,先将苏木素溶于酒精(平时也可将苏木素以10%的浓度溶解好,贮存备用),取一2000mL的三角烧瓶,倾入钾明矾,加入蒸馏水,于电炉上加热,熔解钾明矾,完全熔解后,待温度至90左右时,加入预先溶解好的酒精苏木素,

18、继续加热至沸腾,延续3-5min,此时溶液逐渐加深,变为紫红色,拔离电源,加入黄色氧化汞,当充分氧化后,重新插上电源继续加热3-5min,此时溶液变深紫色,拔去电源,直接将三角烧瓶插入预先备好的冰水里,放于暗处,第二天过滤后加入冰醋酸即可。伊红染液配方(100mL):伊红1g,70-75%酒精100mL。配制方法:先将伊红用蒸馏水(少许)调成浆糊状,再加入酒精,边加边搅拌,直到彻底溶解,此时试剂有些混浊,取少许冰醋酸,加入到试剂中去,试剂逐渐转变为清亮,呈鲜红色即可。H.E染色程序如下:脱蜡、脱苯、复水、染色、脱水、透明、封固。脱蜡、脱苯、复水具体步骤为:二甲苯2-5min二甲苯2-5min1

19、00%乙醇2min95%乙醇2min水洗。染色的步骤如下:苏木素染色10min水洗10mL/L盐酸乙醇分化数秒水洗碳酸锂溶液显色数秒水洗伊红染色2min95%乙醇2min95%乙醇2min100%乙醇2min100%乙醇2min二甲苯2min二甲苯2min。然后树胶封片(封片前应将盖玻片在二甲苯中浸泡数秒,以使观察更为清晰)。封片后即可在显微镜下观察其病理组织学变化并拍摄图片。3.实验结果3.1 临床诊断结果123例疑似病例中,CPV试纸盒诊断为阳性的共103例。3.1.1发病年龄分布情况犬细小病毒阳性病例,年龄在1个月15岁之间,其中以6月龄以下所占比例较高具体分布情况见表3.1。表3.1

20、103例犬细小病毒阳性病例的年龄分布年龄阳性病例数比例/(%)06月龄6765.06月龄1岁1514.61岁5岁109.75岁15岁1110.7合计103100.03.1.2 发病季节分布情况犬细小病毒发病无明显季节性,一年四季均可发生,但以春、冬季多发。具体分布情况见表3.2。表3.2 103例犬细小病毒阳性病例的季节分布季节阳性病例数比例/(%)春3332夏1817.5秋2221.4冬3029.1总计103100.03.2 临床治疗结果单独采用对症治疗的36例患犬,痊愈3例,治愈率约为8.3%;单独采用对症治疗的10例患犬,痊愈5例,治愈率为50%;采用综合治疗的57患犬,痊愈50例,治愈

21、率为87.7%。表明综合治疗方法较前种方法效果更好。3.3 大体剖检结果9776号典型死亡犬 体表观察:体况消瘦,被毛松软,眼球下陷,肛门周围附有血样稀便。 腹腔检查:腹腔内有血性腹水;肝脏有明显肿大,肝边缘钝圆,且其中一叶有破裂口切口外翻,; 肺脏颜色较深潮红,表面有出血点,挤压切面有可见血性泡沫;胃内充满番茄汁样物质,黏膜表面有大量出血斑和溃疡灶;十二指肠有不同程度的充血、坏死现象;肾脏苍白、肿大;胆囊充盈;其他未见异常(如图3.1所示)。 图3.1 9776号典型死亡犬大体剖检结果A肝肿大,其中一叶有破裂口 B.腹腔内有血性腹水,肾苍白、肿大 C.胃粘膜表面出血点,溃疡灶 g.肺脏颜色较

22、深潮红,表面有出血点9742号典型死亡犬体表观察:体况消瘦,被毛松软,眼球下陷,眼结膜黄染,肛门周围附有血样稀便。腹腔检查:肝脏可见红白相间的条状花纹,表面有出血点,胆囊充盈; 肺脏有淤血斑;胃破裂,食糜进入腹腔;肠系膜、腹膜呈黄色;肾脏明显肿大、切口外翻;其他未见异常(如图3.2所示)。 图3.2 9742号典型死亡犬大体剖检结果A 胃有破裂口B 肝脏可见红白相间的条状花纹,胆囊充盈 C肾脏明显肿大、切口外翻3.4 病理切片镜检结果肝:淤血,变性,有淀粉样物质沉着于肝索和豆状隙之间,形成粗细不等的红褐色条索,豆状隙受挤压而变小;肝细胞胞浆内有小水泡,有的核内也出现空泡(图3.3所示)。图3.

23、3 肝(HE400)a肝索 b.窦状隙之间,红褐色的淀粉样物质沉着 c.核空染的肝细胞脾:可见含铁黄素广泛性淤血点,脾淋巴组织减少,淋巴细胞弥漫性坏死,在有些红髓部位巨噬细胞增多(如图3.4所示)。 图3.4 脾(HE400) a.含铁黄素淤血点,HE染色呈褐色 b.淋巴细胞胃:浆膜层和黏膜层可见大量的细胞坏死现象,核浓缩,有的甚至消失;同时浆膜层可见出血现象(如图3.5所示)。 图3.5 胃(HE400) A 黏膜层,B 浆膜层 a.细胞核浓缩深染 b.细胞间溢出的红细胞 c.完全崩解的细胞 d.细胞核碎裂的细胞 十二指肠:病犬十二指肠表面坏死,上皮细胞坏死或脱落,肠腺萎缩,肠腺细胞变性坏死

24、,有的肿大,有的发生空泡化,肠绒毛缩短,绒毛表面组织坏死,有的毛细血管充血,肠腺周围有散在点状出血(如图3.6所示)。 100 400图3.6 十二指肠绒毛 a. 肠绒毛脱落,与浆膜层分开 b.为400的视野的100视野c.小肠绒毛细胞脱落,结构完整性发生改变 d.萎缩的肠腺 e.绒毛毛细血管f.散在出血点肺:有的肺泡塌陷,有些区域肺泡内有大量出血,肺泡壁增厚,在这些区域也有淋巴细胞散在,同时在有些肺泡区可见气肿现象,可见细支气管内有充血现象(如图3.7所示)。 图3.7(HE400) a.支气管内充满红细胞 b.溢出血管的红细胞聚集 c.肺泡壁断裂,结构不完整 d变薄的肺泡壁肾:有出血现象,

25、透明样变,视野内出现红染、均质的玻璃样小体(如图3.8所示)。 图3.8 (HE400)a发生透明样变,视野内出现红染、均质的玻璃样小体 b.出血斑4.讨论4.1 流行特点犬细小病毒病的发生与流行无明显的季节性,一般冬、春季多发。长途运输、天气寒冷、气温骤变、拥挤、卫生水平差等可促进本病的发生与流行。并发感染可加重病情和提高病死率。主要通过直接和间接的接触感染,如病犬的粪、尿、呕吐物和唾液,被病毒污染的食物、垫草等都可传播病毒。该病各年龄阶段犬均可发生,但以幼龄犬的发病率和死亡率相对较高。近年来,随着病毒变异和幼年犬免疫普及,中年和老年犬发病率和死亡率有所上升。该病潜伏期为714d。多数呈现肠

26、炎综合征,少数呈现心肌炎综合征,偶见神经型。4.2 发病病因与发病机理犬细小病毒病的发病原因主要有以下两方面:一方面由于病毒毒力太强,超过了机体的正常抵御能力;另一方面是由于机体自身免疫力低下,存在免疫缺陷或免疫抑制。因此在选择药物时应该首选既有良好抗病毒作用,又能显著改善机体免疫力的复合型制剂。由于往往机体免疫机能受到严重损毁,常会因为细菌的继发感染而加重病情。感染是由病毒侵入所致,最小感染剂量可能小至100个TCID50。病毒侵入后在感染的头两天,在口咽部复制,通过血流传播到其他器官3d5d后出现病毒血症。虽然通常肠炎病症明显, 但细小病毒感染是全身性的。病毒通过血流而不是肠腔到达肠黏膜。

27、病毒主要攻击2种细胞:肠上皮细胞和心肌细胞。健康犬经消化道感染病毒后,病毒主要攻击两种细胞,一种是肠上皮细胞,一种是心肌细胞,分别表现胃肠道症状和心肌炎症状,心肌炎以幼犬多见。4.3诊断与鉴别诊断犬细小病毒病在诊断中要注意与犬瘟热、犬轮状病毒感染及菌痢等疾病相互区别及注意混合感染。上述几种病均有呕吐、腹泻的共同症状,在临床上应该加以区分。其中临床上以犬瘟热和犬细小病毒病多发,且诊治难度较大。4.3.1犬瘟热与犬细小病毒病的鉴别诊断犬瘟热呈现双相热,即病初体温达40左右,持续12天后降至常温,23天后体温再次升高;眼角先是“流泪”,后有脓性分泌物附着在上下眼睑、睫毛、内外眼角;鼻部起初流清鼻涕,

28、后有脓性分泌物,同时有明显的呼吸困难症状。犬细小病毒病无以上现象。绝大多数犬瘟热病例会出现神经症状:肌肉痉挛、共济失调、圆周运动、癫痫样惊厥或昏迷,具体表现为口唇、眼睑、耳部抽动,咬肌颤动、空嚼流涎,一侧或两侧后肢持续性抽搐,随病程发展,抽搐次数和抽搐时间都增加,直至后躯摇摆、后肢麻痹不能站立,小型犬多见踏脚转圈、冲撞等癫痫样发作。犬细小病毒病一般不表现神经症状。犬瘟热病例下腹部皮疹,部分病例表现皮肤过度角化现象,尤其是足垫增厚,具有较好的鉴别诊断意义。犬细小病毒病无此现象。犬瘟热与犬细小病毒性肠炎都有呕吐、腹泻现象,但是,犬细小病毒病呕吐频繁、顽固,口渴明显,饮水后立即出现呕吐,粪便先是有大

29、量黏液和伪膜,后混有血液,如番茄汁样,有特殊的腥臭味。而犬瘟热病例,大、中型犬先是排少量稀粪或柏油壮粪便,不久即便秘,多日不见排便,小型犬以腹泻多见,粪便中混有黏液、血液和气泡等。对犬细小病毒阳性病例中兼有发热、结膜炎、咳嗽体征,应该考虑混合感染情况。4.3.2犬细小病毒病与其他相似病的鉴别诊断犬传染性肝炎:病犬可见黄疸,皮下水肿,暂时性角膜混浊,凝血时间延长。剖检只有胆囊肿大,体腔内有血样渗出液。犬钩端螺旋体病:多发于夏季(79 月) ,有明显黄疸,血尿,尿在暗视野显微镜下可检查出虫体。犬出血性肠炎:属一种过敏反应。24 岁多发,除出现出血性腹泻外,其他特征不明显。为了更准确快速的作出诊断,

30、可用快速诊断试纸进行鉴别诊断。4.4 综合治疗措施4.4.1肠炎型犬细小病毒病的综合治疗肠炎型细小病毒病患犬一般出现严重腹泻、血便、呕吐、脱水、酸中毒和电解质紊乱,治疗时应及时合理的补液和补充电解质,纠正水代谢及酸碱平衡紊乱,犬细小病毒单克隆抗体,高免血清以及免疫球蛋白的及时使用是提高该病治愈率的重要条件。通常选用林格氏液和葡萄糖生理盐水进行补液,补液量依患犬脱水程度而定。体重减轻6%、8%、10%以上,分别为轻、中、重度脱水,补液量分别按公斤体重30mL、50mL、70mL给予为宜,12次/d。在补液中或补液后,患犬精神好转、心率减慢、出现排尿是补足的表现,不见排尿是没有补足的指征,可酌情加

31、大输液量。在补液中须认真监护心、肺功能,发现心率过快,呼吸困难,频频挣扎、呕吐,即使脱水未得纠正,也要果断的限制输液量或者输入速度。补液量大或在寒冷季节输液时,须将液体加温至3738。止吐药可选用爱茂尔、胃复安、654-2等。出血可用止血敏、维生素K等。对腹泻严重的犬,除进行补液外,还应根据酸中毒的轻重程度不同,给予静脉注射5%的碳酸氢钠注射液。对呕吐严重的犬,要特别注意补钾,但要严格控制输入钾的剂量、浓度、速度。静脉输注犬血白蛋白可加速机体渗透压和体液平衡的恢复。此外还应根据病情合理应用抗生素,以控制继发感染。4.4.2心肌炎型犬细小病毒病的综合治疗心肌炎型往往发病急,一般不出现腹泻和呕吐症

32、状,以心力衰竭为特征,表现为呻吟、干咳、黏膜发绀,呼吸困难。心有杂音,心跳加快,大多来不及治疗就迅速死亡。因此在该病的治疗过程中,要时刻注意心脏功能是否正常。对该型患犬在运用单克隆抗体、高免血清的同时,还应当同时运用强心剂,如安钠加、地西绊等,抗休克药可选用654-2、地塞米松等。对该类患犬,应该慎用钾制剂。4.5 病理变化与诊治之间的联系患犬消化道一般有充血出血现象,有时甚至发展为不可逆的坏死灶,尤以胃和十二指肠较为严重,从而导致消化系统机能障碍,可继发胃破裂、肠鼓气、肠套叠等。粪便先是有大量黏液和伪膜,后混有血液,如番茄汁样,有特殊的腥臭味。可作为该病的示病症状,做出初诊。改善饲养管理条件

33、,把病犬隔离安置于干燥通风和安静的环境中,减少应激因素的干扰,让其充分休息。由于患病犬的胃肠正常机能受到严重损害,因此在治疗过程中应严格控制或完全禁止犬的日常进食和饮水。可用加入混有适量食盐、葡萄糖、复合VB、VC的清洁饮水,让病犬限制性的少量饮服,连用5d。从治疗的第3天起,给病犬加喂复合VB片、VB1片、VC片及酵母片等,连喂4d,调整和健全胃肠功能,恢复食欲。有食欲时,给予少量易消化无刺激性的流质食物,做到少食多餐。通过加强护理,可减少消耗,保持体力,提高抗病力,有助于促进病犬康复。实践证明,在腹泻期间,停喂牛奶、鸡蛋、肉类等高脂肪高蛋白食物,有利于减轻胃肠道负担,提高治愈率。患犬的肝可

34、发生淀粉样变性,可导致肝破裂,造成大出血而死亡;脾淋巴细胞可减少,有的甚至发生坏死,导致动物免疫机能下降;肾排泄分泌功能下降,可导致体内有害物质蓄积,严重者可发生尿毒症,引起死亡。因此,在该病的诊治过程中不能只考虑消化道病变,应该综合考虑各种可能的情况,为疾病的正确预后提供保障。对肝肾功能不全者,用药时应充分考虑,不合理的用药可能引起肝腹水等病。治疗时可考虑加保肝药和利尿药,慎用氨基糖甙类抗生素(链霉素、卡那霉素、庆大霉素等)和磺胺类等药物。4.6 预防方法及常见免疫失败原因 平时应对病犬污染的饲具、用具、运输工具和饲养人员等进行严格的消毒,防止本病的扩散传播。然而,该病的根本预防措施在于认真

35、做好免疫接种。目前常用的疫苗有国产的犬六联弱毒疫苗和进口的英特威。使用犬六联弱毒疫苗时,对 3090日龄的犬应注射3次,90日龄以上的犬注射两次即可,每次间隔为24周。每次注射1个剂量(2毫升),以后每半年加强免疫1次。使用犬肝炎、肠炎二联苗时,对3090日龄犬应免疫3次,90日龄以上的犬免疫两次,每次间隔为24周,每次注射1毫升。常见免疫失败原因有以下几种:母源抗体因素,遗传性和获得性免疫缺陷因素;免疫剂量不足,疫苗中病毒株免疫原性差;保存、运输、使用疫苗的方法不对;病毒变异,强毒株流行,疫苗毒株(或菌株)的血清型不包括引起疾病病原的血清型或亚型;免疫程序不合理,潜伏期接种等;犬的免疫机能受

36、到抑制,包括免疫抑制性疾病和药物(如地塞米松、氯霉素)、环境应激、毒物与毒素所引起的免疫抑制;免疫干扰,免疫耐受,免疫麻痹等。因此,诊断时应该充分考虑免疫失败的情况,以免贻误病情。 5.结论本文笔者采用不同方法治疗临床确诊的103例犬细小病毒病病犬,疗效和病理变化如下:1单独对症治疗的治愈率约为8.3%,单独对因治疗的治愈率为50%;综合治疗的治愈率为87.7%。对因治疗结合对症治疗能有效提高治愈率。2. 典型死亡病例的尸体剖检见腹腔内有血性腹水,肝脏肿大或破裂,胃破裂、黏膜表面有大量出血斑和溃疡灶,十二指肠有不同程度的充血、坏死现象,胆囊充盈。3. HE染色,病变以胃肠道最为严重,表现为充血

37、、出血以及坏死。其他病变可见肝出血、淤血,并伴有淀粉样变性,脾有含铁血黄素淤血现象,肾出血。6.参考文献1 侯加法.小动物疾病学M.中国农业出版社,2002.5.2 高得仪.犬猫疾病学M.第二版.北京:中国农业大学出版社,2001.3 陈溥言.兽医传染病学M.中国农业出版社.2006,6.4 宋平,张世华,杨淑云.HE染色切片染色质量差的原因及处理方法J.诊断病理学杂志,1995:2(1):52-52.5 郑伟.病理常规制片技术标准化的探讨J.实用医技杂志,2004,10:88-90.6 陈怀涛,许乐仁.兽医病理学M.北京:中国农业出版社,2005.7 李刚. 犬细小病毒感染的综合防治J .

38、河南畜牧兽医, 2005(9) :29-30.8 闫振贵,高玉君. 犬细小病毒病的综合诊疗J . 畜牧与兽医,2006 ,38 (5) : 35-36.9 耿志贤,时彦胜,郑亚平,等.犬细小病毒病的流行现状调查J.中国畜牧兽医,2009,36:11-11.10 余燕,马金友,陈金山. 犬细小病毒病的组织病理学观察J.山西农业科学,2007,35 (4):75-77.11 王春华,王允海.犬疫苗免疫失败原因及相应的防疫对策J.黑龙江畜牧兽医,2003,(2):001-003.12 内蒙古医学院病理解剖学教研组.彩色病理组织学图谱M.呼和浩特:内蒙古人民出版社,197513 刘宝岩,邱震东.动物病

39、理组织学彩色图变M.长春:吉林科学技术出版社,1990,1114 田亚崴,王淼,谢南犬,等.犬细小病毒病的治疗心得J.中国动物保健,2010(2): 109-110.15 郭海明,孔倩倩.犬细小病毒单克隆抗体在治疗犬细小病毒病中的临床应用J.兽医导刊,2010(2):6061.16 吴炳云,杨建华.犬细小病毒感染的防治技术J.农业装备技术,2010(1):44-44.17 李爱红.组织染色中HE染色法的改良J. 中国当代医药,2010,16(10):54-54,73.18 杨月红,袁静萍.苏木素的配制在病理常规HE制片中的应用J. 实用医技杂志, 2006,13(18): 3196-3196.

40、致谢本文是在徐在品老师精心指导和大力支持以及众多老师和同学的帮助下完成的。首先感谢我的指导老师徐在品老师。他在整个论文的选题、设计、运作和修改上花费大量的时间和精力,提出了很多建议,对实验中遇到的困难给予了我很大的帮助。徐老师严谨求实的治学态度、高度的敬业精神以及兢兢业业的工作作风也对我产生重要的影响。他渊博的知识、开阔的视野和敏锐的思维给了我深深的启迪。在实习期间,导师在学习上给予了眷眷教诲。在此向指导老师徐在品老师致以崇高的敬意和衷心的感谢!在整个试验过程中,特别感谢病理实验室的欧德渊老师和各位师兄师姐,在实验过程中提供的器材与指导,感谢外科实验室的赵伟、王清宇、彭尧、王定坤等师兄师姐在试验中对我的帮助,感谢同学们长久以来对我的帮助。在此请接受我诚挚的谢意,谢谢你们!同时,感谢我的父母,在我的成长生涯中给予我无私的爱与巨大的支持。感谢我们班的同学,感谢曾经给予我帮助的师长、朋友及兄弟姐妹们,祝大家身体健康!万事如意!

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